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積層膠(或稱濃縮膠)的作用原理?
在緩沖系統(tǒng)中的弱酸,如*,在pH6.7時(shí)很少解離,其有效泳動(dòng)速率很低,而氯離子卻有很高的泳動(dòng)速率,蛋白質(zhì)的泳動(dòng)速率介于兩者之間。加上電 壓以后,作為先導(dǎo)離子的氯離子和尾隨離子的*離子分離開來,并在其后面留下一個(gè)導(dǎo)電性較低的區(qū)帶。由于導(dǎo)電性和電場(chǎng)強(qiáng)度成反比,這一區(qū)帶便獲得較高的 電壓梯度,加速*離子的泳動(dòng),使其趕上氯離子,建立起*和氯離子的電壓梯度和泳動(dòng)速率乘積相等的穩(wěn)定態(tài)(我不太明白這句話),使這些帶電顆粒以相 同的速度泳動(dòng),兩種離子之間有明顯的邊界。當(dāng)*、氯離子界面通過樣品進(jìn)入濃縮膠時(shí),在移動(dòng)界面前有一低電壓梯度,界面后有一高電壓梯度。由于在移動(dòng)界 面前的蛋白質(zhì)分子泳動(dòng)速率比氯離子低,因此氯離子能迅速越過。移動(dòng)界面后的蛋白質(zhì)處于較高的電壓梯度中,其泳動(dòng)速率比*快。因此,移動(dòng)的界面將蛋白質(zhì) 分子堆積到一起,形成一條狹窄的區(qū)帶。蛋白質(zhì)在移動(dòng)界面中的濃度作用僅取決于樣品和濃縮膠中Tris-HCl的濃度(為什么?),而與樣品中蛋白質(zhì)的zui初 濃度無(wú)關(guān)。由于濃縮膠為大孔凝膠,故對(duì)蛋白樣品沒有分子篩作用。當(dāng)移動(dòng)的界面到達(dá)濃縮膠和分離膠的界面時(shí),凝膠的pH明顯增加,導(dǎo)致*大量解離。此 時(shí),*的有效泳動(dòng)速率明顯增加,超越蛋白分子,直接在氯離子后移動(dòng)。由于凝膠孔徑變小,蛋白質(zhì)分子的遷移速率降低,落在后面的蛋白質(zhì)便在均一的電壓梯 度和pH環(huán)境中泳動(dòng),并根據(jù)其固有的電荷與分子大小進(jìn)行分離。
1. 配膠緩沖液系統(tǒng)對(duì)電泳的影響?
在SDS-PAGE不連續(xù)電泳中,制膠緩沖液使用的是Tris-HCL緩沖系統(tǒng),濃縮膠是pH6.7,分離膠pH8.9;而電泳緩沖液使用的Tris-*緩沖系統(tǒng)。在濃縮膠中,其pH環(huán)境呈弱酸性,因此*解離很少,其在電場(chǎng)的作用下,泳動(dòng)效率低;而CL離子卻很高,兩者之間形成導(dǎo)電性較低的區(qū)帶,蛋白分子就介于二者之間泳動(dòng)。由于導(dǎo)電性與電場(chǎng)強(qiáng)度成反比,這一區(qū)帶便形成了較高的電壓剃度,壓著蛋白質(zhì)分子聚集到一起,濃縮為一狹窄的區(qū)帶。當(dāng)樣品進(jìn)入分離膠后,由于膠中pH的增加,呈堿性,*大量解離,泳動(dòng)速率增加,直接緊隨氯離子之后,同時(shí)由于分離膠孔徑的縮小,在電場(chǎng)的作用下,蛋白分子根據(jù)其固有的帶電性和分子大小進(jìn)行分離。
所以,pH對(duì)整個(gè)反應(yīng)體系的影響是至關(guān)重要的,實(shí)驗(yàn)中在排除其他因素之后仍不能很好解決問題的情況,應(yīng)首要考慮該因素。
2. 樣品如何處理?
根據(jù)樣品分離目的不同,主要有三種處理方法:還原SDS處理、非還原SDS處理、帶有烷基化作用的還原SDS處理。
1)還原SDS處理:在上樣buffer中加入SDS和DTT(或Beta巰基乙醇)后,蛋白質(zhì)構(gòu)象被解離,電荷被中和,形成SDS與蛋白相結(jié)合的分子,在電泳中,只根據(jù)分子量來分離。一般電泳均按這種方式處理,樣品稀釋適當(dāng)濃度,加入上樣Buffer,離心,沸水煮5min,再離心加樣。
2)帶有烷基化作用的還原SDS處理:碘乙酸胺的烷基化作用可以很好的并經(jīng)久牢固的保護(hù)SH基團(tuán),得到較窄的譜帶;另碘乙酸胺可捕集過量的DTT,而防止銀染時(shí)的紋理現(xiàn)象。100ul樣品緩沖液中10ul 20%的碘乙酸胺,并在室溫保溫30min。
3)非還原SDS處理:生理體液、血清、尿素等樣品,一般只用1%SDS沸水中煮3min,未加還原劑,因而蛋白折疊未被破壞,不可作為測(cè)定分子量來使用。
3. SDS-PAGE電泳凝膠中各主要成分的作用?
聚丙烯酰胺的作用:丙烯酰胺與為蛋白質(zhì)電泳提供載體,其凝固的好壞直接關(guān)系到電泳成功與否,與促凝劑及環(huán)境密切相關(guān);
制膠緩沖液:濃縮膠選擇pH6.7,分離膠選擇pH8.9,選擇tris-HCL系統(tǒng),
TEMED與AP:AP提供自由基,TEMED是催化劑,催化自由基引起的聚合反應(yīng)進(jìn)行; 十二烷基硫酸鈉(SDS):陽(yáng)離子去污劑,作用有四:去蛋白質(zhì)電荷、解離蛋白質(zhì)之間的氫鍵、取消蛋白分子內(nèi)的疏水作用、去多肽折疊。
4. 提高SDS-PAGE電泳分辨率的途徑?
聚丙烯酰胺的充分聚合,可提高凝膠的分辨率。建議做法:待凝膠在室溫凝固后,可在室溫下放置一段時(shí)間使用。忌即配即用或4度冰箱放置,前者易導(dǎo)致凝固不充分,后者可導(dǎo)致SDS結(jié)晶。一般凝膠可在室溫下保存4天,SDS可水解聚丙烯酰胺。
一般常用的有氨基黑、考馬斯亮藍(lán)、銀染色三種染料,不同染料又各自不同的染色方法,具體可參照郭堯君編著的《蛋白質(zhì)電泳技術(shù)手冊(cè)》P82-103。
5.“ 微笑”(兩邊翹起中間凹下)形帶原因?
主要是由于凝膠的中間部分凝固不均勻所致,多出現(xiàn)于較厚的凝膠中。
處理辦法:待其充分凝固再作后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
6. “皺眉”(兩邊向下中間鼓起)形帶原因?
主要出現(xiàn)在蛋白質(zhì)垂直電泳槽中,一般是兩板之間的底部間隙氣泡未排除干凈。
處理辦法:可在兩板間加入適量緩沖液,以排除氣泡。 S1 R) b( |8 L
7. 為什么帶出現(xiàn)拖尾現(xiàn)象?
主要是樣品融解效果不佳或分離膠濃度過大引起的。" h) R3 l6 |" P! }
處理辦法:加樣前離心;選擇適當(dāng)?shù)臉悠肪彌_液,加適量樣品促溶劑;電泳緩沖液時(shí)間過長(zhǎng),重新配制;降低凝膠濃度。(
8. 為什么帶出現(xiàn)紋理現(xiàn)象?
主要是樣品不溶性顆粒引起的。
處理辦法:加樣前離心;加適量樣品促溶劑。
9. 什么是“鬼帶”,如何處理?
“鬼帶”就是在跑大分子構(gòu)象復(fù)雜的蛋白質(zhì)分子時(shí),常會(huì)出現(xiàn)在泳道頂端(有時(shí)在濃縮膠中)的一些大分子未知條帶或加樣孔底部有沉淀,主要由于還原劑在加熱的過程中被氧化而失去活性,致使原來被解離的蛋白質(zhì)分子重新折疊結(jié)合和亞基重新締合,聚合成大分子,其分子量要比目標(biāo)條帶大,有時(shí)不能進(jìn)入分離膠。但它卻于目標(biāo)條帶有相同的免疫學(xué)活性,在WB反應(yīng)中可見其能與目標(biāo)條帶對(duì)應(yīng)的抗體作用。8 N/ p5 D( B, Y9 M, u* |* Z
處理辦法:在加熱煮沸后,再添加適量的DTT或Beta巰基乙醇,以補(bǔ)充不足的還原劑;或可加適量EDTA來阻止還原劑的氧化。
10. 為什么溴酚藍(lán)不能起到指示作用?
我們?cè)趯?shí)驗(yàn)中常會(huì)遇到溴酚藍(lán)已跑出板底,但蛋白質(zhì)卻還未跑下來的現(xiàn)象。主要與緩沖液和分離膠的濃度有關(guān)。
處理辦法:更換正確pH值的Buffer;降低分離膠的濃度。
1. 為什么電泳的條帶很粗?
電泳中條帶很粗是常見的事,主要是未濃縮好的原因。
處理辦法:適當(dāng)增加濃縮膠的長(zhǎng)度;保證濃縮膠貯液的pH正確(6.7);適當(dāng)降低電壓;
2. 為什么電泳電壓很高而電流卻很低呢?
這種現(xiàn)象一般初學(xué)者易出現(xiàn)。比如電壓50v以上,可電流卻在5mA以下。主要是由于電泳槽沒有正確裝配,電流未形成通路。包括:a.內(nèi)外槽裝反;b.外槽液過少;c.電泳槽底部的絕緣體未去掉(比如倒膠用的橡膠皮)。) g9 p/ P& r" S1 [$ u. u. E
處理辦法:電泳槽正確裝配即可。、
3. 濃縮膠與分離膠斷裂、板間有氣泡對(duì)電泳有影響嗎?
這主要出現(xiàn)在初學(xué)者中,一般對(duì)電泳不會(huì)有太大的影響。前者主要原因是拔梳子用力不均勻或過猛所致;后者是由于在解除制膠的夾子后,板未壓緊而致空氣進(jìn)入引起的。"
14. 凝膠時(shí)間不對(duì),或慢或快,怎么回事?
通常膠在30MIN-1H內(nèi)凝。如果凝的太慢,可能是TEMED,APS劑量不夠或者失效。APS應(yīng)該現(xiàn)配現(xiàn)用,TEMED不穩(wěn)定,易被氧化成黃色。如果凝的太快,可能是APS和TEMED用量過多,此時(shí)膠太硬易裂,電泳時(shí)易燒膠。
15. 電泳時(shí)間比正常要長(zhǎng)?
可能由于凝膠緩沖系統(tǒng)和電級(jí)緩沖系統(tǒng)地PH選擇錯(cuò)誤,即緩沖系統(tǒng)地PH和被分離物質(zhì)的等電點(diǎn)差別太小,或緩沖系統(tǒng)的離子強(qiáng)度太高。
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